Page 193 - Егоровские чтения
P. 193

колеоптилей, отступив 5 мм от верхушки проростка. Инкубационной
      средой служила дистиллированная вода. Отрезки помещали в 50-
      миллилитровые бюксы с крышками, содержащие по 10 мл инкубаци­
      онной среды, в которой они инкубировались в темноте при 25 °C при
      периодическом покачивании. Время инкубации составляло 20 ч. С
      помощью аппарата для чтения микрофильмов (Микрофот-5П01, 17-
      кратное увеличение) определяли длину отрезков. Условия лабора­
      торного культивирования ряски малой на смеси Гельригеля, исполь­
      зованной в качестве дополнительного тест-объекта, описаны ранее
      (Петров, Перк, Охлопкова, 1995). Определение активности а-амила-
      зы проводили по общепринятой методике.
         Препаративное выделение (рис. 1) ингибиторов роста из почек
      ольховника кустарникового осуществляли по методу, описанному в
      работе Корнфорта с сотр. (Cornforth, Milborrow, Ryback, Wareing,
      1965) с некоторыми изменениями (Петров, 1998).

                          Результаты и обсуждение.
         Тестирование биологической активности водных элюатов хрома­
      тографических зон после разделения кислой эфирной фракции аце­
      тонового экстракта покоящихся почек на бумаге в системе ИАВ
      (10:1:1) практически во всех зонах выявило наличие только ингиби­
      торов роста. Причем элюаты зон с Rf 0,7-1,0 существенно сильнее,
      чем в других зонах тормозили рост биотеста (на 50-100%), а на учас­
      тке с Rf 0,9 наблюдалось 95-100 %-ное ингибирование растяжения
      клеток с частичной потерей тургора отрезков колеоптилей. Установ­
      лено, что по количеству росттормозящих участков и по уровню био­
      логической активности элюата зоны с Rf 0,9 почки ольховника зна­
      чительно превосходили другие использованные нами растения (рис.
      2).
        Прежде всего, описанные результаты подтверждают общеизвест­
      ный факт, что на хроматограммах после разделения кислой эфирной
      фракции экстрактов почек древесных растений, как правило, обна­
      руживаются только зоны, тормозящие рост биотеста. Росттормозя-
      щие вещества локализуются в зонах с Rf 0,6-0,9 с максимальным
      торможением роста биотеста в зонах с Rf 0,6 или 0,7, если использу­
      ется система ИАВ (10:1:1) и хроматограмма разделяется на 10 зон
      (Дерфлинг, 1985; Hemberg, 1961; Varga, Koves, 1959). При этом зоны
      постоянной локализации максимальной активности ауксиноподоб­
      ных соединений (Rf 0-0,4) и ингибиторов роста (Rf 0,5-0,8) обознача­
      ли как ростовые вещества, занимающие ^-положения на хроматог­
      рамме (Дерфлинг, 1985; Леопольд, 1968; Либберт, 1976). Следуя это­
      му принципу, неидентифицированное вещество (Rf 0,90-0,95) из по­
      чек ольховника с высокой ростингибирующей активностью нами бы-
                                                                    189
   188   189   190   191   192   193   194   195   196   197   198